免疫組化技術在輔助病理診斷和鑒別診斷過程中經(jīng)常起決定性作用，同時對腫瘤患者個體化治療及預后評估也起到了重要的指導性作用。

免疫組化過程及注意事項

1、組織固定目的是為了保存良好的組織形態(tài)及結構，防止組織自溶。所以標本離體后30min內應剖開固定或低溫保存，固定時間以8～24h為宜，4％中性甲醛滲透力強，固定均勻，抗原保存好，為首選固定液。

2、玻片選擇對大多數(shù)病理科而言，一般多使用多聚賴氨酸的掛膠片，適用范圍廣，價格便宜；但有條件的科室可以選擇陽離子免疫組化玻片，效果更佳。

3、組織切片石蠟組織切片要薄，厚度一般為3～4μm，無缺損、皺紋、折疊、氣泡，烤片溫度65～68℃，脫蠟要凈�？酒�忌高溫或重復烘烤，以防止抗原擴散及丟失。

4、抗原修復直接影響免疫組化檢測結果的可靠性。在進行免疫組化染色時并非所有的抗原都要進行抗原修復，抗原性保存良好或基本保存者不需要修復。不同抗體必須選擇最適合的修復方法，最常用的是熱修復法，尤其是細胞核抗原經(jīng)熱修復后，染色效果特別好。熱修復包括水煮加熱、高壓加熱和微波加熱3種。

熱修復法影響抗原修復的關鍵因素有2個：

①溫度：高壓加熱時間為2～3min，水煮加熱時間為25～30min；

②修復液的種類和pH值：應與修復方法和修復時間相對應。所以必須嚴格按照抗體使用說明書進行抗原修復。鑒于抗原修復的方法較多，在實際工作中，究竟選用何種抗原修復，應根據(jù)抗體種類予以選擇，要清楚影響抗原的因素及各種抗原修復的方法，必要時可以多種方法同時使用，這樣更具有針對性，標記結果更理想。雖然有學者認為，修復液沸騰時的氣泡容易導致脫片，但組織處理不佳是最重要的影響因素。

5、抗體的選擇及使用要選擇適宜的一抗，不同的二抗與一抗?jié)舛炔黄ヅ洌�都不能得到滿意的結果。在滴加一抗、二抗時要先輕輕傾去PBS液，選用韌性好、吸水性強的紙巾吸干組織周圍液體，輕壓組織面吸干組織表面水分（不能滑動），防止試劑被稀釋或致濃度不均，立即滴加適量試劑，用細玻棒將試劑擴展至組織外1～2mm，防止出現(xiàn)邊緣效應，不能觸碰組織，液面厚約1mm為宜。試劑表面的氣泡用玻棒點破，否則氣泡張力作用會導致局部無試劑，出現(xiàn)氣泡下假陰性反應。濕盒孵育要定恒溫，整個過程均要防止干片，孵育時必須加蓋。

6、顯色及復染DAB顯色劑須現(xiàn)配現(xiàn)用，10min內用完。顯色時間也不同程度影響免疫組化的質量，最好鏡下控制顯色，一般把握在3～5min，所以操作者應具備常用抗體定位的知識。顯色后用蘇木精復染，注意要淡染。

容易被忽視的問題

試劑的保存因為抗體是蛋白質，保存或使用不當不但會造成浪費，而且變質會出現(xiàn)假陰性結果。要注意抗體的有效期，對于一次用不完的抗體可保存在冰箱內，而不要放在冷凍室，反復凍融，抗體效價會急劇下降而失效。同時防止抗體的相互交叉污染和細菌污染。

環(huán)境溫度標準實驗室溫度是18～22℃，實際工作中卻不然，條件差的實驗室冬天可低于12℃，夏天可高于37℃，冬夏溫差可達到25℃。一切酶促反應溫度最關鍵，反應程度也是冬夏季有別，這也是造成染色結果不穩(wěn)定的一個重要原因，因此應該選用37℃恒溫箱進行孵育。

異常染色結果及原因①脫片：黏膠玻片不合格、組織固定脫水透明不充分、切片太厚、實驗中干片等；

②花斑狀著色：脫蠟不凈、切片厚薄不勻、切片時組織下有氣泡或組織不規(guī)則松脫、試劑加樣時有氣泡或組織表面殘留水分太多、干片等；

③邊緣效應：指組織切緣非正常著色。因一抗二抗加量少，試劑沒有擴展至組織外或沒有在封閉濕盒中孵育，水分揮發(fā)使邊緣抗體濃度增大、組織邊緣松脫或干片；

④非特異性背景著色：染色過程中干片或沖洗不徹底；血清蛋白密封不充分；內源性過氧化物酶未完全阻斷；內源性生物素未阻斷（肝、腎、胰腺，含有中性粒細胞組織）；固定不及時或固定不佳；切片太厚；緩沖液酸堿度未達標。

綜上所述，人工免疫組化染色操作簡單，但人為及環(huán)境影響因素較多，必須有高度的責任心和嫻熟的操作技術，嚴格按操作流程操作，完善室內環(huán)境監(jiān)控，盡可能的減少或杜絕人為和環(huán)境的干擾，才能取得滿意的結果。